Замена датчика кислорода на приоре
Добро пожаловать!
Датчик кислорода – он же лямбда зонд в народе, как его только не называют, но всё же единственное у него настоящее название, это Датчик концентрации кислорода, на приоре всего два этих датчик, в отличие от автомобилей ВАЗ 2114, ВАЗ 2110, и т.д. (На них по одному датчику), но тоже не на всех, вот к примеру если брать автомобиль ВАЗ 2114 с 1.6 двигателем, то там тоже присутствует два кислородных датчика, на ВАЗ 2110 с шестнадцати клапанным двигателем тоже два и на приоре как вы уже успели заметить тоже два, один из них идёт как диагностический и определяет сгоревшую смесь и подаёт эти показания на контроллер (Это ЭБУ, его ещё мозги называют) а другой идёт как регулирующий и он уже от и до регулирует смесь у автомобиля, стоят эти датчики по разному, то есть диагностический стоит после катализатора, а регулирующий до него, более подробно вы с этим со всем подробно в статье ознакомитесь.
Примечание!
Замена обоих датчиков производиться при наличие: Гаечных ключей и перчаток, из гаечных ключей вам именно нужно будет запастись ключом «на 22» которым вы и будете отворачивать датчик!
Краткое содержание:
- Замена датчика кислорода
- Проверка датчика кислорода
- Дополнительный видео-ролик
Где находятся датчики кислорода?
На выпускном коллекторе их местонахождение, они в него вкручены, если быть более точнее, то в коллекторе присутствует два отверстия с резьбой, одной до катализатора, второе после него, так вот в первое отверстие которое идёт до катализатора ввёрнут регулирующий кислородный датчик (Указан синей стрелкой), он кстати в основном всегда и выходит из строя, а в другое отверстие которое идёт после катализатора ввёрнут диагностический датчик и для наглядности на фото ниже этот датчик указан красной стрелкой.
Когда нужно менять датчики кислорода?
Начнём с диагностического, он нужен лишь для того чтобы контроллер понимал в каком состоянии находиться коллектор при условии что регулирующий датчик будет исправен, попробуем объяснить простыми словами, к примеру автомобиль работает нормально все датчики исправны но засорён очень сильно катализатор, диагностический датчик это понимает потому что он стоит за ним и определяет богатая ли смесь после катализатора вылетает или же бедная, тем самым если он определит что, что то с катализатором не так, то в таком случае лампа «Check Engine» загорится, второй же датчик, регулирующий, уже смесь регулирует и при выходе его из строя, концентрация выхлопных газов повышается (Всё это из-за того что смесь богатиться, простыми словами из глушителя будет более чёрный дым выходить чем это было ранее и расход увеличится), ухудшается приёмистость и холостой ход становится неровный, лампа «Check Engine» в этом случае может как загореться, так и не гореть вовсе (Она загорится только если датчик полностью умрёт, если же он будет на грани умирания и уже неверные показания будет давать, то данная лампа не загорится).
Примечание!
Данный датчик выходит из строя и загрязняется от неправильно настроенной смеси, а не правильно настроена она может из-за некачественного бензина, из-за неправильно выставлено зажигания и т.д., в общём со временем датчик из-за этого загрязняется и плохо подавать сигнал начинает, поэтому если вы его проверили на работоспособность (Как это сделать мы ниже описали) и вольтметр показал что датчик не работает и он загрязнён у вас сильно при этом, тогда его можно попробовать прочистить, делается это с помощью ортофосфорной кислоты (Она просто единственная кто его берёт), а именно она выливается в стакан (Вся) и в ней замачивается датчик (Минут 15-20), после чего он вынимается и моется в воде (На контакты разъёма не попадите водой в этом случае), далее сушится и устанавливается на автомобиль (Если вы видите что датчик за 15-20 минут не очистился, то можете его ещё раз положите в кислоту и подождать ещё некоторое время), после проделанной операции есть вероятность что вы его вернёте к жизни, только если он будет отлично работать то вообще не рекомендуем так делать, потому что есть вероятность что он умереть может после такой процедуры.
Примечание!
Когда вы придёте в автомагазин или же на рынок, там будет небольшой но и не малый выбор датчиком кислорода (Если магазин специализированный), какие то будут идти с нагревательным элементом, а какие то нет, машины Лада Приора с завода комплектуются датчиками с нагревательным элементом, поэтому то и при выборе брать нужно будет именно такой, он по дороже выйдет, но суть вся заключается в следующим, датчики кислорода начинают нормально работать только лишь когда они нагреваются до 300 °С, по началу кстати автомобиль (Пока он не прогрет) работает вообще по другим датчикам и датчик кислорода только вступает в работу когда он прогрет и чтобы он долго не прогревался, данный нагревающий элемент в него и встраивают, поэтому при покупке не ошибитесь!
Снятие:
1) Оба датчика, что диагностический, что регулирующий, снимаются абсолютно одинаково, поэтому пример замены мы будем показывать на самом верхнем, в начале если автомобиль прогрет дайте ему полностью остыть, потому что при рабочей температуре двигателя, температура выпускного коллектора доходит порядка до 300-500 °С, а может и больше если машина будет красться в пробки в тёплую погоду и тем самым греться, после того как двигатель остынет, с минусовой клеммы аккумулятора скиньте провод который к ней крепиться (Если вы не умете этого делать, тогда изучите статью под названием: «Замена аккумулятора», там в пункте 1 всё описано) и после чего отожмите фиксатор который на фото ниже указан стрелкой и разъедините между собой колодку проводов и разъём, который идёт от кислородного датчика.
2) Следом идущий провод от датчика кислорода, выньте из теплоизоляционного щитка, он к нему за счёт защёлки крепиться, чтобы её вынуть, нужно будет просто сжать фиксатор (Защёлку) руками и вынуть её из отверстия в щитке как это показано на первом рисунке на фото ниже и в завершение при помощи гаечного ключа или же специальной головки которую можно найти в автомагазине (Высокая торцевая головка с разрезным сектором она называется, очень удобная вещь, если будете работать с автомобилями в дальнейшем то его приобретите, если же замену делаете только лишь для себя то он вам не нужен, потому что и гаечным ключом справитесь) выкрутите сам датчик кислорода как это показано на втором рисунке, на фотографии ниже:
Установка:
Новый датчик на своё место устанавливается в обратном порядке снятию, кстати рекомендуем перед установкой резьбу у датчика смазать хорошей графитной смазкой.
Проверка датчика кислорода:
1.
Любой датчик, любую деталь нужно проверять перед тем как бежать в магазин и покупать новую, для проверки датчика кислорода вам нужно будет запастись вольтметром и скрепкой, либо же ноутбуком и проводом для диагностики, начнём сперва описывать первый вариант, он заключается в следующем, находите на разъёме идущим от датчика кислорода сигнальный провод, он может быть любого цвета но как правило он идёт чёрным, поэтому если у вас есть чёрный провод то можно попробовать начать с него, а именно к нему нужно будет подсоединить положительный провод идущий от вольтметра (Через скрепку подсоединять нужно), а отрицательный провод кинуть на массу (Массой может выступать двигатель автомобиля) и после чего заведя автомобиль, нужно будет смотреть на показания которые будет давать вольтметр, они не должны выходить за 1 и на 0 не должны стоять, то есть в районе 0.01-0.99 колеблются показания должны, если всё так и будет то датчик исправен, если же показания при работающем двигателе застынут на какой либо отметки (К примеру 0.
32) то датчик неисправен и нуждается в замене.
Примечание!
Такой способ проверки который указан в пункте 1, кстати ещё в ролике показан который размещён ниже:
2. Теперь второй способ который делается при помощи ноутбука, а заключается он в следующем, подключаете через диагностический разъём и провод, ноутбук к мозгам автомобиля, после чего заводите и выставляете на ноутбуке через соответствующую программу все данные по кислородному датчики и убеждаетесь чтобы они колеблются и не стоят на одном месте, более подробно как провести эту процедуру, вы можете увидеть на примере автомобиля Лада Калина, как это в видео-ролике чуть ниже показано.
Дополнительный видео-ролик:
Увидеть наглядно процесс снятия данного датчика с выпускного коллектора автомобиля, вы можете в видео-ролике который расположен чуть ниже:
youtube.com/embed/VgCPpHyGlcE?feature=oembed» frameborder=»0″ allow=»accelerometer; autoplay; encrypted-media; gyroscope; picture-in-picture» allowfullscreen=»»/>Краткий обзор: рассмотрение оптимальной температуры для краткосрочного хранения эпителиальных клеток
1. Yang R, Liu F, Wang J, Chen X, Xie J, Xiong K. Эпидермальные стволовые клетки при заживлении ран и их клиническое применение. Стволовые клетки Res Ther. (2019) 10:229. 10.1186/s13287-019-1312-z [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
2. Сагизаде М., Крамеров А.А., Свендсен К.Н., Любимов А.В. Краткий обзор: стволовые клетки для заживления ран роговицы. Стволовые клетки. (2017) 35:2105–114. 10.1002/stem.2667 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
3. Роговая О.С., Файзулин А.К., Васильев А.В., Кононов А.В., Терских В.В. Реконструкция эпителия уретры кролика кератиноцитами кожи. Acta Nat. (2015) 7:70–7. 10.32607/20758251-2015-7-1-70-77 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
4.
5. Ван Баскирк Р.Г., Бауст Дж.М., Снайдер К.К., Мэтью А.Дж., Бауст Дж.Г. Гипотермическое хранение и криоконсервация. БиоПроцесс Инт. (2004) 2. Доступно в Интернете по адресу: http://www.bioprocessintl.com/wp-content/uploads/bpi-content/0210ar06_76760a.pdf
6. Мишель С.Г., Ламуралья II Г.М., Мадариага М.Л.Л., Андерсон Л.М. Инновационное холодильное хранение донорских органов с использованием устройств Paragonix Sherpa Pak™. Сердце Легких Сосудов. (2015) 7:246-55. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
7. Oie Y, Nozaki T, Takayanagi H, Hara S, Hayashi R, Takeda S и др.. Разработка метода транспортировки клеточного листа для регенеративной медицины. Методы Tissue Eng Часть C. (2014) 20:373–82.
8. Колверт А., Коти Х. Криоконсервация: технологии, приложения и риски/результаты. Hauppauge: Nova Science Publishers, Incorporated; (2013). [Google Scholar]
9. Хант CJ. Криоконсервация стволовых клеток человека для клинического применения: обзор. Трансфус Мед Гематер. (2011) 38:107–23. 10.1159/000326623 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
10. Xu X, Cowley S, Flaim CJ, James W, Seymour L, Cui Z. Роль путей апоптоза в низкой скорости восстановления после криоконсервации диссоциированных эмбриональных стволовых клеток человека. Биотехнологическая прог. (2010) 26:827–37. 10.1002/btpr.368 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
11. Чакраборти Н., Бисвас Д., Паркер В., Мойер П., Эллиотт Г.Д. Роль микроволновой обработки в сухом хранении клеток млекопитающих. Биотехнология Биоинж. (2008) 100:782–96. 10.1002/bit.21801 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
12.
Chakraborty N, Chang A, Elmoazzen H, Menze MA, Hand SC, Toner M. Метод центробежной сушки для лиоконсервации клеток млекопитающих. Энн Биомед Инж. (2011) 39:1582–91. 10.1007/s10439-011-0253-1 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
13. Пухлев И., Го Н., Браун Д.Р., Левин Ф. Толерантность к высыханию в клетках человека. Криобиология. (2001) 42:207–17. 10.1006/cryo.2001.2324 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
14. Бакальчева И., Лесли С., Макдональд В., Спарго Б., Рудольф А. Обратимое сшивание и обработка СО как подход к стабилизации эритроцитов. Криобиология. (2000) 40:343–59. 10.1006/cryo.2000.2257 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
15. Фаулер А., Тонер М. Криотравма и биоконсервация. Энн Н.Ю. Академия наук. (2005) 1066:119–35. 10.1196/annals.1363.010 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
16. Chen B, Wright B, Sahoo R, Connon CJ. Новая альтернатива криоконсервации для краткосрочного хранения стволовых клеток для использования в клеточной терапии с использованием альгинатной инкапсуляции.
Методы Tissue Eng Часть C. (2013) 19: 568–76. 10.1089/ten.tec.2012.0489 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
17. Райт Б., Кейв Р.А., Кук Дж.П., Хуторянский В.В., Ми С., Чен Б. и др. Повышение жизнеспособности эпителиальных клеток роговицы при эффективная транспортировка/хранение с использованием структурно модифицированного гидрогеля альгината кальция. Реген Мед. (2012) 7: 295–307. 10.2217/rme.12.7 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
18. Райт Б., Ми С., Коннон К.Дж. К использованию гидрогелей в лечении дефицита лимбальных стволовых клеток. Наркотиков Дисков сегодня. (2013) 18:79–86. 10.1016/j.drudis.2012.07.012 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
19. Wojcik G, Ferrari S, Romano V, Ponzin D, Ahmad S, Parekh M. Методы хранения роговицы: соображения и влияние на результаты операции. Эксперт Преподобный Офтальмол. (2020) 16:1–9. 10.1080/17469899.2021.1829476 [CrossRef] [Google Scholar]
20. Armitage WJ. Сохранение роговицы человека.
Трансфус Мед Гематер. (2011) 38:143–7. 10.1159/000326632 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
21. Ringstad H, Reppe S, Schøyen TH, Tønseth KA, Utheim TP, Jackson CJ. Функция стволовых клеток сохраняется при кратковременном хранении культивированных слоев эпидермальных клеток при 12°C. ПЛОС ОДИН. (2020) 15:e0232270. 10.1371/journal.pone.0232270 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
22. Reppe S, Jackson CJ, Ringstad H, Tønseth KA, Bakke H, Eidet JR и др. Высокая пропускная способность скрининг добавок с использованием факторного дизайна для повышения выживаемости сохраненных культивированных эпителиальных слоев. Стволовые клетки (2018) 2018: 1–9. 10.1155/2018/6545876 [Статья бесплатно PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
23. Jackson CJ, Reppe S, Eidet JR, Eide L, Tønseth KA, Bergersen LH, et al. Оптимизация температуры хранения для сохранения недифференцированных клеточных свойств культивируемых слоев эпидермальных клеток человека.
Научный доклад (2017) 7:8206. 10.1038/s41598-017-08586-7 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
24. Jackson C, Eidet JR, Reppe S, Aass HC, Tønseth KA, Roald B, et al.. Влияние температуры хранения на фенотип культивируемых клеток эпидермиса, хранящихся в среде без ксенобиотиков. Curr Eye Res. (2016) 41:757–68. 10.3109/02713683.2015.1062113 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
25. Jackson C, Aabel P, Eidet JR, Messelt EB, Lyberg T, Von Unge M, et al.. Влияние температуры хранения на клеточные листы культивируемых эпидермальных клеток. в среде без ксенобиотиков. ПЛОС ОДИН. (2014) 9:e105808. 10.1371/journal.pone.0105808 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
26. Knapik A, Kornmann K, Kerl K, Calcagni M, Contaldo C, Vollmar B и др. Практика хранение кожных трансплантатов расщепленной толщины и гистологическая оценка качества ткани. J Plast Reconstruct Aestet Surg. (2013) 66:827–34. 10.1016/j.bjps.2013.02.003 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
27.
Li Z, Overend C, Maitz P, Kennedy P. Оценка качества сетчатых расщепленных кожных трансплантатов, хранящихся при 4°C в изотонических растворах и питательных средах с помощью клеточных культур. Бернс. (2012) 38:899–907. 10.1016/j.burns.2012.02.002 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
28. Seet WT, Maarof M, Khairul Anuar K, Chua K.-H, Ahmad Irfan AW, et al.. Срок годности оценка эквивалента двухслойной кожи человека, MyDerm™. ПЛОС ОДИН. (2012) 7:e40978. 10.1371/аннотация/44cd1027-1f9e-4843-b013-84ca45ae942f [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
29. Robb EC, Bechmann N, Plessinger RT, Boyce ST, Warden GD, Kagan RJ. Среда хранения и температура поддерживают нормальную анатомию трупной кожи человека для трансплантации в полнослойные кожные раны. J Burn Care Rehabil. (2001) 22:393–6. 10.1097/00004630-200111000-00008 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
30. Ислам Р., Коррайя Р.М., Пасович Л., Хан А.З., Аасс ХДД, Эйдет Дж.Р. и др. Влияние длительного хранения на ARPE -19клетки, хранящиеся при трех различных температурах хранения.
Молекулы. (2020) 25:5809. 10.3390/molecules25245809 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
31. Kitahata S, Tanaka Y, Hori K, Kime C, Sugita S, Ueda H, et al. Влияние температуры хранения на критическую функциональность на индуцированных человеком плюрипотентных суспензиях клеток пигментного эпителия сетчатки, полученных из стволовых клеток. Научный доклад (2019) 9:2891. 10.1038/s41598-018-38065-6 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
32. Хан А.З., Утейм Т.П., Реппе С., Сандвик Л., Либерг Т., Роальд Б.Б. и др. Листы культивированного пигментного эпителия сетчатки человека (чРПЭ): поиск подходящих условий хранения. Микроск Микроанал. (2018) 24:147–55. 10.1017/S1431927618000144 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
33. Pasovic L, Eidet JR, Olstad OK, Chen DF, Lyberg T, Utheim TP. Влияние температуры хранения на экспрессию генов выживания клеток в культивируемых клетках ARPE-19. Curr Eye Res. (2017) 42:134–44. 10.3109/02713683.
2016.1145236 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
34. Pasovic L, Eidet JR, Brusletto BS, Lyberg T, Utheim TP. Влияние температуры хранения на ключевые функции культивируемых клеток пигментного эпителия сетчатки. J Офтальмол. (2015) 2015: 263756. 10.1155/2015/263756 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
35. Pasovic L, Utheim TP, Maria R, Lyberg T, Messelt EB, Aabel P, et al. Оптимизация температуры хранения для культивируемых клеток ARPE-19. J Офтальмол. (2013) 2013:216359. 10.1155/2013/216359 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
36. Eidet JR, Utheim ØA, Islam R, Lyberg T, Messelt EB, Dartt DA и др. Влияние температуры хранения на морфологию, жизнеспособность, количество клеток и метаболизм культивируемого эпителия конъюнктивы человека. Curr Eye Res. (2015) 40:30–9. 10.3109/02713683.2014.909497 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
37. Vasania VS, Hari A, Tandon R, Shah S, Haldipurkar S, Shah S, et al.
. Трансплантация аутологичных ex vivo расширил эпителиальные клетки конъюнктивы человека для лечения птеригии: проспективное открытое многоцентровое клиническое исследование с одной группой. J Офтальмологический Vis Res. (2014) 9: 407–16. 10.4103/2008-322X.150800 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
38. Eidet JR, Utheim OA, Raeder S, Dartt DA, Lyberg T, Carreras E, et al. Эффекты бессывороточное хранение на морфологию, фенотип и жизнеспособность ex vivo культивируемых конъюнктивального эпителия человека. Эксп. Разр. (2012) 94:109–16. 10.1016/j.exer.2011.11.015 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
39. Jackson CJ, Pasovic L, Raeder S, Sehic A, Roald B, De La Paz MF, et al.. Optisol-GS хранение культивируемых эпителиальных клеток лимба человека при температуре окружающей среды лучше, чем при гипотермическом хранении. Curr Eye Res. (2020) 12:1–7. 10.1080/02713683.2020.1770295 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
40. Utheim TP, Salvanos P, Utheim ØA.
Транскриптомный анализ культивируемых лимбальных эпителиальных клеток на интактной амниотической мембране после гипотермического хранения в оптисол-ГС. J Функц. (2016). 7:4. 10.3390/jfb7010004 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
41. Utheim O, Islamic R, Lyberg T, Roald B, Eidet JR, De La Paz MF, et al. сохранение без ксенобиотиков культивируемых эпителиальных клеток лимба человека. ПЛОС ОДИН. (2015) 10:e0118517. 10.1371/journal.pone.0118517 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
42. Utheim TP, Raeder S, Utheim ØA, de la Paz M, Roald B, Lyberg T. Контроль стерильности и долгосрочное хранение в банках глаз культивируемых клеток лимбального эпителия человека для трансплантации. Бр Дж Офтальмол. (2009) 93:980–3. 10.1136/bjo.2008.149591 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
43. Raeder S, Utheim TP, Utheim OA, Nicolaissen B, Roald B, Cai Y, et al. Эффекты органной культуры и хранения Optisol-GS на структурную целостность, фенотипы и апоптоз в культивируемом эпителии роговицы.
Invest Ophthalmol Vis Sci. (2007) 48: 5484–93. 10.1167/iovs.07-0494 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
структура и функция культивируемых оральных кератиноцитов человека. ПЛОС ОДИН. (2015) 10:e0128306. 10.1371/journal.pone.0128306 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
45. Lee EJ, Lee SA, Kim J. Влияние сывороточного альбумина человека на длительное хранение жизнеспособности оральных кератиноцитов человека в условиях легкой гипотермии. Криобиология. (2005) 50:103–11. 10.1016/j.cryobiol.2004.12.001 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
46. Faes K, Goossens E. Кратковременное хранение тканей яичек человека: влияние температуры хранения и размера ткани. Репрод Биомед Онлайн. (2017) 35:180–8. 10.1016/j.rbmo.2017.04.011 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
47. Кирсенбаум А.Л., Трес Л. Гистология и клеточная биология: введение в патологию. Электронный журнал, Амстердам: Elsevier Health Sciences; (2015). [Google Scholar]
48.
da Cruz L, Chen FK, Ahmado A, Greenwood J, Coffey P. Трансплантация RPE и ее роль в заболеваниях сетчатки. Прога Retin Eye Res. (2007) 26:598–635. 10.1016/j.preteyeres.2007.07.001 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
49. Schwartz SD, Regillo CD, Lam BL, Eliott D, Rosenfeld PJ, Gregori NZ, et al. Эмбриональные стволовые клетки человека. полученный пигментный эпителий сетчатки у пациентов с возрастной дегенерацией желтого пятна и макулярной дистрофией Штаргардта: последующее наблюдение за двумя открытыми исследованиями фазы 1/2. Ланцет. (2015) 385: 509–16. 10.1016/S0140-6736(14)61376-3 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
50. Кашани А.Х., Лебковски Дж.С., Раххал Ф.М., Эйвери Р.Л., Салехи-Хад Х., Данг В. и др.. А. биоинженерный монослой пигментного эпителия сетчатки для прогрессирующей сухой возрастной дегенерации желтого пятна. Sci Transl Med. (2018) 10:1–10. 10.1126/scitranslmed.aao4097 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
51. da Cruz L, Fynes K, Georgiadis O, Kerby J, Luo YH, Ahmado A, et al.
. Фаза 1 клинического исследования сетчатки, полученной из эмбриональных стволовых клеток. Пятна пигментного эпителия при возрастной макулодистрофии. Нац биотехнолог. (2018) 36:328–37. 10.1038/nbt.4114 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
52. Ricardo JR, Cristovam PC, Filho PA, Farias CC, De Araujo AL, Loureiro RR, et al. Трансплантация конъюнктивальных эпителиальных клеток, культивированных ex vivo у пациентов с тотальным дефицитом лимбальных стволовых клеток. Роговица. (2013) 32:221–8. 10.1097/ICO.0b013e31825034be [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
53. Le Q, Xu J, Deng SX. Диагноз дефицита лимбальных стволовых клеток. Окул Серф. (2018) 16:58–69. 10.1016/j.jtos.2017.11.002 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
54. Pellegrini G, Traverso CE, Franzi AT, Zingirian M, Cancedda R, De Luca M. Долгосрочные восстановление поврежденных поверхностей роговицы аутологичным культивированным эпителием роговицы. Ланцет. (1997) 349:990–3. 10.
1016/S0140-6736(96)11188-0 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
55. Nishida K, Yamato M, Hayashida Y, Watanabe K, Yamamoto K, Adachi E, et al. Реконструкция роговицы с тканеинженерные клеточные пласты, состоящие из аутологичного эпителия слизистой оболочки полости рта. N Engl J Med. (2004) 351:1187–96. 10.1056/NEJMoa040455 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Снижение рабочей температуры керамических топливных элементов с электролитом с высокой протонной проводимостью
Разработка функциональных возможностей гетероструктуры NCO/CeO2 для быстрой миграции протонов. Кредит: Наука (2020). DOI: 10.1126/science.aaz9139 Группа исследователей, связанных с несколькими учреждениями в Китае, разработала способ снижения рабочей температуры керамических топливных элементов с помощью электролита с высокой протонной проводимостью. В своей статье, опубликованной в журнале Science , группа описывает свой электролит и то, насколько хорошо он работал при тестировании в водородном топливном элементе.
Мэн Ни и Цзунпин Шао из Гонконгского политехнического университета и Нанкинского технологического университета, соответственно, опубликовали статью «Перспектива» в том же выпуске журнала, в которой изложили потребность в более холодных керамических топливных элементах и объяснили работу, проделанную командой в Китае.
Топливный элемент — это устройство, которое производит электричество в результате химических реакций. Протонно-керамический топливный элемент основан на керамических электролитных материалах, обладающих высокой протонной проводимостью при высоких температурах, обычно от 800° до 1000°C. Ни и Шао отмечают, что снижение рабочих температур керамических топливных элементов является целью инженеров, чтобы повысить их долговечность и эффективность, а также сделать их производство менее дорогим. Они также отмечают, что в настоящее время для этого доступны два варианта: сделать электролит более тонким для снижения сопротивления или полностью разработать новый электролит.
Предыдущие попытки уменьшить толщину электролита были сведены на нет из-за трудностей их массового производства и связанных с этим высоких производственных затрат. В этой новой попытке исследователи выбрали второй вариант и разработали новый электролит, состоящий из Na x CoO 2 -CeO 2 композитный. Испытания показали, что электропроводность электролита составляет от 0,1 до 0,3 См·см –1 при нагреве от 370° до 520°С. Чтобы более полно протестировать электролит, исследователи использовали его для создания водородного топливного элемента и обнаружили, что он способен выдавать 1 ватт на сантиметр. Они также отметили, что устройство может работать как электролизер для производства водорода, работая в обратном направлении.
Ни и Шао предполагают, что работа, проделанная группой в Китае, важна, поскольку она показывает, что различные типы электролитов могут использоваться для снижения рабочей температуры керамических топливных элементов, хотя они также признают, что требуется дополнительная работа, чтобы определить, новый подход может быть коммерциализирован.